一、Triton X-100 是什么?
Triton X-100,全称 Octylphenol ethoxylate,是一种常用的非离子型去污剂。它在生物化学实验中非常常见,可用于裂解细胞、溶解膜蛋白、清洗免疫印迹膜等。
主要功能
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温和破坏细胞膜 Triton X-100 可插入细胞膜脂质双层,使膜通透化,但不会像 SDS 那样强烈变性蛋白,适合提取可溶性细胞膜蛋白和细胞质蛋白。
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保持蛋白复合体结构 由于是非离子型、不带电荷,它常用于需要保持蛋白-蛋白相互作用的实验,如免疫共沉淀、pull-down。
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去除非特异性结合 在 Western blot、免疫染色中,用 Triton X-100 洗涤可减少背景信号。
常见应用浓度
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注意:过高浓度可能导致蛋白复合物解离,一些膜蛋白也可能被过度溶解或变性。另外,Triton X-100 含芳香环结构,对环境不友好,欧盟已限制生产,实验中也可考虑 Triton X-114 或 NP-40 Substitute 等替代品。
二、Triton X-100 裂解液能做什么?
Triton X-100 裂解液由 Triton X-100、NaCl、Tris-HCl 等组成,并含有多种蛋白酶抑制剂成分,可有效抑制蛋白降解,并维持原有的蛋白间相互作用。
其原理是利用去污剂 Triton X-100 破坏脂质双分子层,溶解胞质和细胞膜,破坏分子间微弱结合键的大部分蛋白质抗原。Triton X-100 浓度在 0.1%–1% 时即可满足几乎所有溶解需求,并可补充等离子浓度的盐及使 pH 接近中性。
用该裂解液得到的蛋白样品,可以用 BCA 蛋白浓度测定试剂盒测定蛋白浓度。 但由于含有较高浓度去垢剂,不能用 Bradford 法测定由 Triton X-100 裂解液获得的样品。
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四、操作步骤
(一)贴壁培养细胞
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取 Triton X-100 裂解液置室温融解混匀,加入 PMSF,使 PMSF 终浓度为 1 mM。
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去除贴壁细胞的培养液,用 PBS、生理盐水或无血清培养液清洗 1 次,低速离心,弃上清,留取沉淀。 如果血清中的蛋白没有干扰,也可以不用清洗。
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按照 6 孔板每孔加入 150–250 μl 含有 PMSF 的 Triton X-100 裂解液,用移液器轻轻吹打,使裂解液和细胞充分接触,置于冰上或 4℃裂解。通常裂解液作用于细胞 1–3 s 内,细胞就会被裂解。如果细胞密度非常高,可适当加大裂解液用量到 200–250 μl。
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10000–12000 g,4℃离心 5–10 min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。
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进行后续 SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
(二)悬浮培养细胞
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取 Triton X-100 裂解液置于室温融解混匀后,加入 PMSF,使 PMSF 终浓度为 1 mM。
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低速离心悬浮细胞,弃上清,收集沉淀。
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用手指轻弹细胞,使其松散。按照 6 孔板每孔细胞加入 150–250 μl 含有 PMSF 的 Triton X-100 裂解液。如果细胞密度非常高,可适当加大裂解液用量到 200–250 μl。再用手指轻弹以充分裂解细胞,充分裂解后应没有明显细胞沉淀。
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10000–12000 g,4℃离心 5–10 min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。
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进行后续 SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
(三)组织样本
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取 Triton X-100 裂解液置于室温融解混匀后,加入 PMSF,使 PMSF 终浓度为 1 mM。
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把组织剪切成细小的碎片,越小越好。
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取在液氮或超低温冰箱中冷冻 30 min 以上的组织,迅速研磨,研磨过程尽量控制在 1–2 min 之内,以减少蛋白降解。
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按照每 20 mg 组织加入 150–250 μl 裂解液的比例,加入含有 PMSF 的裂解液,冰上或 4℃裂解 15–30 min。
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步骤 3、4 亦可采用如下过程:按照每 20 mg 组织加入 150–250 μl 裂解液的比例加入含有 PMSF 的 Triton X-100 裂解液。用玻璃匀浆器或组织研磨器匀浆,直至充分裂解,该过程尽量控制在 1–2 min 之内,以减少蛋白降解。
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10000–12000 g,4℃离心 5–10 min(如无低温离心机,室温下离心亦可),取上清。
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进行后续 SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
五、一句总结
Triton X-100 是一种温和的非离子去污剂,用于裂解细胞、溶解膜蛋白,同时尽可能保持蛋白天然构象和相互作用。 Triton X-100 裂解液则适合常规蛋白提取、Western、IP 和 co-IP 等实验。使用时记住三点:冰上操作、临用前加 PMSF、避免反复冻融。

